CENTRE DE RECHERCHE DELALANDE (FRANCE)
ESSAI DE L'EAU DE MER ISOTONIQUE SUR UN ÉTAT DE CHOC HÉMORRAGIQUE
Dirigé par les Drs. B. Pourrias et G. Raynod
MÉTHODES
Cette étude a été faite sur le chien. L'animal est anesthésié par voie intraveineuse au moyen d'un barbiturique (pentobarbital, 25 mg/kg).
La pression artérielle systolique est mesurée au membre postérieur au moyen d'un capteur de pulsation (E & M INSTRUMENTS COMPANY, HOUSTON, TEXAS).
L'électrocardiogramme est enregistré en dérivation d1 - d2 - d3.
L'état de choc hémorragique est obtenu par prélèvement rapide d'un volume de 30 ml/kg de sang artériel. Le prélèvement représente une perte de 50 à 60% du volume du sang circulant.
Les constantes biologiques suivantes sont contrôlées: hémoglobinémie, glycémie, urémie. L'hématocrite, la numérotation et la formule sanguine sont également examinés.
Après l'installation de l'état de choc, vérifié par une chute dramatique de la pression artérielle systolique, une bradycardie et une bradypnée, le plasma de Quinton est administré en injection lente.
De nouveaux examens biologiques cliniques sont pratiqués au réveil de l'animal, 24 heures, 4 jours, 8 à 15 jours après le choc hémorragique.
RÉSULTATS
L'expérimentation a été faite sur un chien mâle de race Beagle de 12 kg et âge d'un an environ.
a) Examen préopératoires
Les examens préopératoires ont été les suivants:
Examens biologiques: vitesse de sédimentation, hématocrite, numération et formule sanguine, volume globulaire moyen (V.G.M.) hémoglobinémie, glycémie, urémie.
Examens cliniques : observation externe de l'animal et prise de la température rectale.
Il a été vérifié ainsi que l'animal présentait un état physiologique normal.
Les résultats sont portés sur le tableau ci-joint (voir à 1024x768).
QUINTON PLASMA [aussi appelé Ocean Plasma ou Plasma Marin]
ESSAI CLINIQUE SUR LE CHIEN - EXAMENS BIOLOGIQUES
CENTRE DE RECHERCHES MÉDICALES DELALANDE - FRANCE
| Avant le
choc hemorr- hagique
|
Au réveil
| Après le choc hémorrhagique
|
24 hrs
| 4 jours
| 6 jours
| 8 jours
| 15 jours
|
Hématities (En mille)
| 6480
| 4140
| 4980
| 4410
| 3280
| 4000
| 5260
|
Leucocites:
Neutrophiles
Basophiles
Eosinophiles
Lymphocytes
Monocytes
| 14600
77%
-
-
21% 2%
| 4960
59% -
1% 40% -
| 8840 87% -
-
13%
-
| 5840 69% - 4% 25% 2%
| 20380 63% - 1% 33% -
| 20840 66% - 3% 30% 1%
| 16240 71% - 5% 22% 2%
|
Hématocrites %
| 49
| 33
| 31
| 33
| 35
| 37
| 40
|
Volume globulaire moyen (VGM)
| 70
| 79
| 62
| 74
| 106
| 92
| 76
|
Hémoglobine g/dl
| 17.3
| 11.5
| 11
| 11.2
| 12
| 13
| 15.8
|
Glycémie g/l
| 0.50
| 1
| 0.70
| 0.69
| 0.63
| 0.51
| 0.20
|
Urémie g/l
| 0.43
| 0.47
| 0.21
| 0.47
| 0.47
| 0.49
| 0.54
|
b) Temps opératoire
Sous anesthésie, l'animal avait une pression artérielle systolique de 160 mmHg, son rythme cardiaque était de 140 batt./mn, sa ventilation de 2 litres/mn.
Le prélèvement artériel a été fait à l'artère poplitée. Le volume prélevé a été de 500 mi en 30 mn. Ce volume représente 54% de la masse sanguine.
La symptomatologie de l'état de choc a été observée dans tous ses stades:
À la fin du prélèvement, la pression artérielle systolique périphérique était nulle ainsi que la ventilation. Le rythme cardiaque était de 50 batt/mn environ.
Le plasma de Quinton a été alors administré par voie intraveineuse dans la veine saphène en deux fractions. Le volume total administré a été de 300 ml, c'est-à-dire 60% du volume prélevé.
15 minutes après l'administration des 300 ml de plasma de Quinton:
Dès l'effondrement de la pression artérielle, l'animal avait été mis en respiration assistée.
Au temps 30 minutes, la pression artérielle était de 170 mm Hg.
Au temps 60 minutes, la pression artérielle était de 120 mm Hg et le rythme cardiaque de 150 batt/mn.
c) Examens postopératoires
Les prélèvements sanguins pour contrôle hématologique ont été faits au réveil de l'animal, c'est-à-dire environ 4 heures après le début de l'anesthésie et 3 heures après l'administration du plasma marin (de Quinton).
Les mêmes examens ont été pratiqués à nouveau 24 heures, 4 jours, 6 jours, 8 jours et 15 jours après l'intervention. Les résultats sont consignés dans le tableau ci-joint.
DISCUSSION
a) Au réveil
La pression artérielle présente une diminution de 40% par rapport au niveau initial après être passée par une phase de récupération totale (180 mm Hg) 15 mm et 30 mm après l'administration du plasma marin (de Quinton).
On observe une diminution de 36% du nombre des hématies et de 65% du nombre de leucocytes. Le volume globulaire moyen reste pratiquement identique. Le taux d'hémoglobine diminue de 25%. La glycémie augmente de 100%, probablement par hyperactivité sympathic-adrénalinique.
b) Période de 1 à 4 jours après l'intervention
L'hématocrite reste au niveau postopératoire ainsi que le nombre d'hématies.
Le nombre de leucocytes augmente au temps 24 heures.
La glycémie tend à redevenir normale.
Le taux d'urée sanguine reste dans les normes (0,10 à 0,40 g/litre).
c) Mesure aux 6e et 8e jours
On observe une baisse du nombre d'hématies et une augmentation des leucocytes. Le volume globulaire moyen augmente alors qu'il devrait diminuer également, ce qui peut être le signe d'une anémie macrocytaire. Le taux d'hémoglobine et de glycémie revient vers les valeurs initiales.
d) 15e jour Les valeurs préopératoires sont pratiquement retrouvées à l'exception de la glycémie. À signaler que l'oxygénation du sang veineux prélevé au niveau de la veine brachiale antérieure a été trouvée à 16%, soit un chiffre conforme aux valeurs normales chez le chien.
Remarque: Notons que 24 heures après le choc hémorragique, l'anima! avait récupéré une activité et un comportement normaux.
La récupération postopératoire de la diurèse et de l'alimentation s'est déroulée
normalement. La cicatrisation artérielle a été rapide et n'a pas nécessité
d'antibiotiques et de sulfamides.
CONCLUSION
Cette expérimentation limitée à un seul cas a permis de constater la récupération
après un choc hémorragique dû à un prélèvement de 55% de la masse sanguine
par compensation de cette perte à 60% avec du Plasma Marin et de
reproduire ainsi les observations décrites par Quinton (L'eau de mer, milieu
organique, Masson éd., 1912, p. 169).
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